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黄萎病抗性持续监测

作者:小编 更新时间:2025-06-30 点击数:

黄萎病抗性持续监测.png

一、监测背景与目的

黄萎病是由大丽轮枝菌(Verticillium dahliae)引起的土传维管束病害,可导致棉花、茄子、辣椒等作物落叶、枯萎甚至减产 50% 以上。抗性持续监测通过长期追踪作物对黄萎病的防御能力,评估品种抗性稳定性、田间防控措施有效性及病原菌变异动态,为抗病品种选育和病害预警提供依据。

二、监测对象与病原菌准备

监测对象选择:

作物类型:优先选择高感病作物(如棉花、茄子)的抗病品种(如抗黄萎病棉花品种 “中棉所 96”)、对照品种(高感病品种)及主栽品种;

样本规模:田间监测需设置至少 3 块重复试验区,每区种植 100 株以上,避免偶然误差。

病原菌菌株收集与活化:

菌株来源:从不同产区(如新疆棉区、长江流域)采集病株,分离纯化大丽轮枝菌,建立菌株库(覆盖不同致病力类型);

活化培养:使用 PDA 培养基(马铃薯葡萄糖琼脂)在 25℃恒温培养 7-10 天,待菌丝铺满平板后,用无菌水冲洗制备孢子悬浮液(浓度调整为 1×10⁶个孢子 /mL)。

三、监测方法与实施步骤

田间自然发病监测(常规方法)

苗期(2-3 片真叶)开始首次调查,之后每 7-10 天调查一次,直至作物收获前;

重点关注花期至结铃期(棉花)、结果期(茄科作物),此阶段为发病高峰期。

选择连作 3 年以上的重病田,或人工接种病原菌(播种前将孢子悬浮液均匀浇灌于耕作层,每亩用量 50-100L);

采用与生产一致的栽培管理(如施肥、灌溉),避免人为干预影响抗性表现。

种植与接种:

调查周期:

人工接种抗性鉴定(精准评估)

用微量注射器将孢子悬浮液注入茎秆皮层,观察维管束变色程度及叶片枯萎症状。

作物幼苗(2-4 叶期)采用灌根法接种(每株浇灌 10mL 孢子悬浮液),置于温室(温度 22-28℃,湿度 60%-80%);

接种后 14-21 天观察发病情况,比田间自然发病更快速验证抗性。

幼苗接种法:

茎秆注射法(针对木本植物):

病原菌群体动态监测

土壤取样:每年春秋季采集根际土壤(5-20cm 深度),采用分子生物学方法(如 PCR 扩增病原菌特异性基因VdAG1)检测土壤中菌量;

菌株致病性分化:定期从病株中分离菌株,通过接种鉴别寄主(如不同抗性棉花品种),判断病原菌小种是否发生变异(如从落叶型小种变为非落叶型)。

四、抗性评价指标与数据记录

病情调查指标

病情指数(DI):∑(各级病株数 × 对应级数)/(总株数 × 最高级数)×100;

相对抗性指数:(对照品种病情指数 - 待测品种病情指数)/ 对照品种病情指数 ×100%(数值越高,抗性越强)。

0 级:无病;

1 级:1-2 片真叶或下部叶片黄化、轻微萎蔫;

3 级:半数叶片萎蔫,部分叶片脱落;

5 级:全株萎蔫,大量落叶或枯死。

症状分级(以棉花为例):

计算方法:

生理指标辅助监测

酶活性检测:发病初期取叶片测定过氧化物酶(POD)、多酚氧化酶(PPO)活性(抗病品种酶活性峰值出现早且活性高);

次生代谢物:检测叶片中植保素(如棉酚)、酚类物质含量,抗性品种通常积累更多抗病物质。

长期数据追踪

建立品种抗性档案,记录连续 3-5 年的病情指数变化,分析抗性衰退趋势(如某品种第 1 年病情指数 15,第 3 年升至 30,提示抗性下降);

同步记录田间气候数据(如降雨量、温度),排除环境因素对抗性表现的干扰(如高湿年份易加重发病)。

五、监测标准与预警应用

参考标准

国内农业行业标准:NY/T 1443.4《棉花抗病虫性评价技术规范 第 4 部分:抗黄萎病》;

国际通用方法:采用国际植物病理学会(ISPP)推荐的苗期人工接种鉴定法。

预警与防控建议

抗性衰退预警:若连续 2 年病情指数上升超过 20%,提示品种抗性减弱,需及时更换品种或调整防控措施(如轮作、土壤消毒);

病原菌变异预警:当田间出现新型症状(如非典型落叶),需快速分离菌株,通过分子标记(如 SSR)检测是否出现新小种,为抗病育种提供靶标;

田间管理联动:结合监测结果优化防控方案,如在抗性品种田间发现零星病株时,立即拔除并浇灌恶霉灵等杀菌剂,防止病原菌扩散。

技术延伸应用

结合遥感技术(如无人机多光谱成像),大面积监测作物冠层光谱变化,快速识别黄萎病发病区域;

对长期种植的抗病品种进行分子标记检测(如筛选与抗性基因连锁的标记),确认抗性基因是否丢失或沉默(如棉花抗黄萎病基因Vr2的表达量下降)。

Tag: 黄萎病抗性持续监测 实验分析 检测机构 第三方检测 科研检测 植物检测
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